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當(dāng)前位置:首頁(yè)技術(shù)文章細(xì)胞轉(zhuǎn)染:脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染的幾個(gè)實(shí)驗(yàn)方法

細(xì)胞轉(zhuǎn)染:脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染的幾個(gè)實(shí)驗(yàn)方法

更新時(shí)間:2019-11-22點(diǎn)擊次數(shù):2881

實(shí)驗(yàn)原理
脂質(zhì) 體(LR)試劑是陽(yáng)離子脂質(zhì)體DOTMA和DOPE的混合物(1:1)。它適用于把DNA 轉(zhuǎn)染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細(xì)胞中,是目前條件下方面的轉(zhuǎn)染方法之一。轉(zhuǎn)染率高,優(yōu)于磷酸鈣法,比它高5-100倍,能把DNA和RNA轉(zhuǎn)染到各種細(xì)胞。
用LR進(jìn)行轉(zhuǎn)染時(shí),首先需要優(yōu)化轉(zhuǎn)染條件,應(yīng)找出該批LR對(duì)轉(zhuǎn)染某一特定細(xì)胞適合的用量、作用時(shí)間等,對(duì)每批LR都要做。先要固定一個(gè)DNA的量和DNA/LR混合物與細(xì)胞相互作用的時(shí)間,DNA可從1-5ug和孵育時(shí)間6h,開始,按這兩個(gè)參數(shù)繪出相應(yīng)LR需用量的曲線,再選用LR和DNA兩者的劑量,確定出轉(zhuǎn)染時(shí)間。因LR對(duì)細(xì)胞有一定的毒性,轉(zhuǎn)染時(shí)間以不超過(guò)24h為宜。
細(xì)胞種類:COS-7、BHK、NIH-3T3、Hela和Jurkat等任何一種細(xì)胞均可作為受體細(xì)胞。
實(shí)驗(yàn)步驟
1. 操作步驟(方法一):
   1) 取6孔培養(yǎng)板,向每孔中加入2ml含(1-2) x 105 個(gè)細(xì)胞的培養(yǎng)基,37℃、18% CO2 培養(yǎng)基40%-60%匯合時(shí)。
   2) 轉(zhuǎn)染液制備:在聚苯乙烯管中制備以下兩液(為轉(zhuǎn)染1個(gè)空細(xì)胞所用的量)。
      A液:用不含血清培養(yǎng)基稀釋DNA使?jié)舛葹?-10ug,終量100ul。
      B液:用不含血清培養(yǎng)基稀釋LR,使終濃度為2-50ug,終量100ul。
輕輕混合A液、B液,室溫中置10-15min,稍后會(huì)出現(xiàn)微濁現(xiàn)象,但并不妨礙轉(zhuǎn)染。
   3) 轉(zhuǎn)染準(zhǔn)備:用2ml不含血清培養(yǎng)基漂洗2次,再加入1ml不含血清培養(yǎng)基。
   4) 轉(zhuǎn)染:把A/B復(fù)合物緩緩加入培養(yǎng)基中,搖勻,置37℃溫箱中6-24h,吸除無(wú)血清轉(zhuǎn)染液,換入正常培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。
   5) 其余處理:如觀察、篩選、檢測(cè)等與其他轉(zhuǎn)染法相同。
   6) 注意:轉(zhuǎn)染時(shí)切勿加血清,血清對(duì)轉(zhuǎn)染效率有很大影響。
2. 快速脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法操作步驟(方法二):
   1) 將細(xì)胞以5 x 105個(gè)/孔接種于6孔板中培養(yǎng)24h,使其達(dá)到50%-60%板底面積。
   2) 在試管中配制DNA-脂質(zhì)體復(fù)合物。
      a. 在1ml無(wú)血清DMEM中稀釋PSV1-neo質(zhì)粒DNA或供體DNA。
      b. 旋轉(zhuǎn)1s,再加入脂質(zhì)體懸液,旋轉(zhuǎn)。
      c. 室溫下放置5-10min,使DNA結(jié)合在脂質(zhì)體上。
   3) 棄去細(xì)胞中的舊液,用1ml無(wú)血清DMEM洗細(xì)胞1次后棄去,向每孔中直接加入1mlDNA-脂質(zhì)體復(fù)合物,37℃培養(yǎng)3-5天。
   4) 再于每孔中加入含20%胎牛血清的DMEM,繼續(xù)培養(yǎng)14-24h。
   5) 吸出DMEM-DNA-脂質(zhì)體混合物加入新鮮含10%胎牛血清的DMEM,2ml/孔,再培養(yǎng)24-48h。
   6) 用細(xì)胞刮或消化法收集細(xì)胞,以備分析鑒定。
3. 穩(wěn)定的脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法:
   1) 接種細(xì)胞同前述,細(xì)胞長(zhǎng)至50%板底面積可用于轉(zhuǎn)染。
   2) DNA-脂質(zhì)體復(fù)合物制備轉(zhuǎn)染細(xì)胞同前。
   3) 在每孔中加入1ml含20%胎牛血清的DMEM,37℃培養(yǎng)48h。
   4) 吸出DMEM,用G418選擇性培養(yǎng)基稀釋細(xì)胞,使細(xì)胞生長(zhǎng) 一定時(shí)間,篩選轉(zhuǎn)染克隆,方法參照細(xì)胞克隆篩選法進(jìn)行。
4. Invitrogen公司的Lipofectamine2000在24孔板轉(zhuǎn)染單層貼壁細(xì)胞。(別的方法可以參考生產(chǎn)商提供的protocol)
   1) 轉(zhuǎn)染前1天將0.5~2×105細(xì)胞接種于24孔培養(yǎng)板,并加入500ul不含抗生素 的*培養(yǎng)基,以保證轉(zhuǎn)染時(shí)細(xì)胞匯合達(dá)90~95%。
   2) 準(zhǔn)備復(fù)合物
      a. 將0.8ug DNA稀釋于50ul無(wú)血清無(wú)抗生素的培養(yǎng)液中輕輕渾勻。
      b. 將2ul Lipofectamine2000稀釋于50ul無(wú)血清無(wú)抗生素的培養(yǎng)液中,輕輕渾勻,室溫孵育5分。注意:必須在25分內(nèi)進(jìn)行。
      c. 5分后將它們混合,并輕輕渾勻,室溫孵育20分。
   3) 吸去培養(yǎng)板的培養(yǎng)基,用PBS或無(wú)血清培養(yǎng)基清洗細(xì)胞2次。
   4) 將復(fù)合物(總體積100ul)加入培養(yǎng)孔,前后搖動(dòng)培養(yǎng)板使其分布均勻。
   5) 將細(xì)胞放入培養(yǎng)箱 孵育4~6h后,可以更換含血清培養(yǎng)液去除復(fù)合物(也可不用)。
   6) 24~48h后可以觀察轉(zhuǎn)入基因表達(dá) 情況。
   7) 穩(wěn)定轉(zhuǎn)染:換含血清培養(yǎng)基24h后將細(xì)胞以1:10(或更高比例)傳代,1天后更換篩選培養(yǎng)基篩選。
 

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